Skip to Content

Акусто-оптический метод определения группы крови - дискретный и интегральный способы обработки экспериментальных результатов

ID: 2014-03-3930-A-3530
Оригинальная статья (свободная структура)
ГБОУ ВПО Саратовский ГМУ им. В.И. Разумовского Минздрава РФ

Резюме

Настоящая работа посвящена дальнейшему изучению предложенного ранее акусто-оптического метода определения групповой принадлежности крови человека по системе ABO. Одной из наиболее важных характеристик любого инструментального метода определения группы крови является его разрешающая способность. В рамках данной работы предлагается принципиально новый подход к обработке экспериментальных результатов и, следовательно, к оценке разрешения метода. Использованный ранее интегральный (фотометрический) подход приводил к тому, что значение разрешающей способности метода было ограничено диапазоном значений яркости, регистрируемой веб-камерой, используемой в качестве фотоприемника. Кроме того, преимущества веб-камеры как цифрового фотоприемника, не использовались  в полной мере. Предлагаемый дискретный подход к обработке экспериментальных результатов предполагает производить оценку силы реакции агглютинации на основе прямого подсчета пикселей, отвечающих заданному условию, в области, выбранной для статистического анализа. Этот подход позволяет ограничить возможное разрешение метода только размерами анализируемой области, разрешением веб-камеры. В работе показано, что применение нового дискретного подхода к обработке результатов эксперимента позволяет значительно повысить разрешающую способность акусто-оптического метода определения групповой принадлежности крови человека. 

Ключевые слова

ABO, агглютинация, эритроцит, определение группы крови, седиментация, пиксель, RGB разложение

Статья

1. Введение

Определение группы крови по системе AB0 или Rh (системе резус) является одним из наиболее часто используемых тестов лабораторной диагностики. Например, в США ежегодно проводится от 150 до 200 млн подобных тестов в центрах по переливанию крови [1]. Учитывая соотношение населения России и США можно полагать, что в нашей стране количество тестов по типированию крови приближается к 100 млн в год. Естественно, такая частотность тестирования крови на групповую принадлежность требует создание специальной аппаратуры, автоматов для определения группы крови, например [2-10].

К сожалению, вынуждены констатировать, что по сведениям, которыми мы располагаем, отечественные приборы, автоматы для определения групп крови к настоящему времени отсутствуют. Это делает любые разработки данного направления актуальными.

Одной из наиболее важных характеристик такого рода приборов является его разрешающая способность. Авторы  различных работ определяют этот параметр по-разному  [6, 7, 11, 12].  Напомним, что под разрешающей способностью можно понимать отношение оптического сигнала P+, соответствующего положительной реакции агглютинации (сыворотка иммунологически адекватна группе исследуемой крови – агглютинаты образуются), к уровню сигнала  P- для отрицательной реакции агглютинации (сыворотка не соответствует данной группе крови - агглютинаты не образуются) [11, 12]. Очевидно, что увеличение разрешающей способности R=P+/P- повышает надёжность определения группы крови. Чрезвычайно важно отметить, что ошибка в определении группы крови образца должна исключаться абсолютно, единственное послабление прибору – в некоторых случаях он может не определить группу крови анализируемой пробы.

Один из способов повышения разрешающей способности прибора – использование стоячих ультразвуковых волн, предложенное в [13] и детально рассмотренное в [14, 15]. Действительно, применение ультразвука приводит, в частности, к укрупнению формируемых агглютинатов, что облегчает их оптическую регистрацию независимо от наблюдаемых явлений: движение агглютинатов в потоке исследуемой жидкости [11] или их седиментация в кювете [12]. Сочетание ультразвукового действия на исследуемый биообъект с одновременным его зондированием световым излучением будем называть акусто-оптическим методом типирования крови. Оптическое зондирование объекта в акусто-оптическом методе типирования крови может быть основано на турбидиметрии.

В [5, 13-15] регистрация фотосигнала производилась аналоговым способом с помошью фотодиода, а в [11, 12, 16-18] использовалась цифровая полихромная вебкамера с последующей обработкой фотографии с помощью ПК. В полученных изображениях выбиралась область, соответствующая зондирующему пучку, находилось среднее по области обработки значение яркости Bср  в зеленом канале RGB. Затем, при помощи полученной ранее калибровочной кривой [16, 17], производится перерасчет значения Bср в соответствующую ему значение мощность падающего светового потока P. Очевидно, что при таком подходе максимально возможное разрешение метода ограничивается диапазоном изменения величины B, которая, в случае 8-битного кодирования изображения варьируется в пределах 0-255. Кроме того, при таком фотометрическом  подходе практически не используются преимущества вебкамеры, как цифрового приемника. В этой связи в настоящей работе предлагается использовать другой подход к обработке изображений, основанный на подсчете количества пикселей, соответствующий заданному уровню яркости. При таком подходе единственным фактором, ограничивающим разрешение, является размер анализируемой области или иначе - разрешение вебкамеры.

Задача настоящей работы – анализ возможности применения нового подхода к обработке результатов с целью повышения разрешающей способности акусто-оптического метода регистрации агглютинации эритроцитов, а, следовательно, повышения надежности определения групповой принадлежности крови человека.

2. Объект исследования, технология пробоподготовки, техника экспериментов

Объектом исследования являлась донорская кровь всех четырех групп по системе ABО, соответствующие агглютинирующие сыворотки и стандартные эритроциты. Образцы донорской крови подвергались центрифугированию (3000 обор/мин, 5 минут), затем плазма отбиралась для дальнейшего определения группы крови обратным методом, а эритроцитарная масса использовалась для определения группы крови образца прямым методом. Прямая компонента перекрестного метода определения групповой принадлежности крови человека заключается в анализе эритроцитов донора при помощи стандартных гемагглютинирующих сывороток. Цельная кровь или предварительно разбавленные физиологическим раствором эритроциты донора, пациента смешиваются с сыворотками I, II, III и, в случае необходимости, и с сывороткой IV группы крови. Наблюдая за тем, в каких пробах наступила реакция агглютинации, лаборант, производящий исследование, определяет группу крови. Обратная компонента перекрестного метода заключается в анализе плазмы донора, пациента при помощи стандартных эритроцитов. Плазма крови смешивается со стандартными эритроцитами I, II и III групп, и затем, в зависимости от того, в каких пробах наступила реакция агглютинации, лаборант, проводящий исследование, определяет группу исследуемой крови. Комплекс предварительных экспериментов [16, 17] выявил оптимальные условия для наблюдения реакции агглютинации эритроцитов для обеих компонент перекрестного метода. Для прямой компоненты оптимальными являются: соотношение «стандартная сыворотка»/«исследуемые эритроциты» равное 17:1, при условии, что эритроцитарная масса разбавляется физиологическим раствором в соотношении 1:78. В этом случае объемная доля эритроцитарной массы в растворе составляет 1,05 %, а объемная доля стандартной сыворотки - 17,8 %. Для обратной компоненты перекрестного метода оптимальными являются: соотношение «исследуемая плазма»/«стандартные эритроциты» равное 4,4:1, при условии, что исследуемая плазма разводится физиологическим раствором в соотношении 1:4,3. При этом объемная доля исследуемой плазмы в растворе составляет 17,8 %, а объемная доля стандартных эритроцитов 4,05 %. Для определения групповой принадлежности крови человека турбидиметрическим методом для обеих компонент перекрестного метода использовалась кювета объемом 2800 мкл прямоугольной формы с внутренней толщиной зазора 5 мм. 

Сразу после приготовления каждая проба подвергалась воздействию стоячей ультразвуковой волны. Схема установки приводится на рисунке 1(а) (1 – светодиод, 2 – конденсор, 3 – нейтральный светофильтр, 4 – кювета, 5 – ультразвуковой вибратор, 6 –ультразвуковой генератор, 7 – цифровая фотокамера, 8 – компьютер). Кювета с исследуемой смесью располагалась на пьезопреобразователе, волна ориентировалась в вертикальном направлении. Для возбуждения пьезокерамического преобразователя использовался генератор Г3-112/1 с усилителем, а его выходное напряжение контролировалось осциллографом С1-79 (не показан на рис. 1(а)). Генератор настраивался резонансно по отношению к преобразователю ν=2,25 МГц, а его выходное напряжение, подаваемое на пьезокерамику, не превышало 15 В, что обеспечивало ультразвуковое действие на эритроциты без их гемолиза.

Предварительные эксперименты позволили  подобрать оптимальное время действия ультразвука на смесь «стандартная сыворотка-исследуемые эритроциты-физиологический раствор» - 60 с [16, 17]. Это же время использовалось и для смеси «исследуемая плазма-стандартные эритроциты-физиологический раствор». 

Биообъект зондировался коллимированным излучением светодиода типа LXHL-G1S, спектр которого соответствовал спектру поглощения гемоглобина в зеленой области (рис. 1(б)).  Луч, прошедший исследуемый раствор, поступал на полихромную веб-камеру Logitect-Quick Cam, подключённую к ПК (рис. 1(а)), с помощью который кювета с раствором фотографировалась. Отметим, что все настройки веб-камеры были зафиксированы и не изменялись при проведении экспериментальных работ.

Действие стоячей ультразвуковой волны приводило к группировке эритроцитов в ее узлах, взвесь эритроцитов расслаивалась, эритроциты и их агглютинаты левитировали в исследуемой жидкости. При выключении ультразвука крупные агглютинаты быстро седиментировали (положительная реакция агглютинации, агглютинаты образуются), а среда значительно просветлялась. При отрицательной реакции (агглютинаты не образуются) выключение ультразвука приводило к рассыпанию эритроцитарных агрегатов в силу их слабых (не иммунных) связей, среда оставалась мутной, менее прозрачной. Седиментация агглютинатов после выключения ультразвука продолжалась в течение 90 сек. (время инкубации образца), после чего образцы фотографировались с помощью веб-камеры.

В случае использованного ранее [11, 12, 16-18] интегрального фотометрического подхода при обработке фотографий осуществлялось разложение каждого изображения на RGB компоненты, а статистическому анализу подвергалась лишь G составляющая. Для 8-разрядной цифровой камеры кодирование состояния одного пикселя с помощью одного байта позволяет передавать 256 различных оттенков, например, серого цвета от полностью черного (B=0 ед. яркости) до полностью белого (B=255 ед. яркости). Затем на полученном изображении выбиралась область, соответствующая зондирующему световому пучку. Область квадратной формы задавалась следующим образом. Выбиралась центральная точка, и, затем, для определения границ области, вверх, вниз, влево и вправо откладывалась величина ширины выбранной области w, которая могла варьироваться в зависимости от задачи эксперимента (Рис. 1(в, г)). 

Полученные средние значения яркости по заданной области пересчитывались в мощность светового потока, падающего на фотокамеру. Для этого использовалась экспериментально полученная калибровочная кривая – кривая соответствия мощности светового потока P, падающего на CCD камеру, величине яркости пикселя B (вопросы калибровки устройств цифровой микроскопии рассматривались, например, в [16-18]. В этом случае разрешение метода вычисляется по формуле R=P+/P-, где P- и P+ - значения мощности светового потока, падающего на CCD камеру для отрицательной и положительной реакции соответственно.

В рамках данного исследования предлагается использовать другой, дискретный подход к обработке изображений. Как и в интегральном случае, изображение раскладывается на RGB каналы и в дальнейшем учитывается только G составляющая. Область ширины w (Рис. 1(в, г)) выбиралась таким же образом, как и для интегрального фотометрического случая. Значение w также могло варьироваться в широких пределах в зависимости от поставленной задачи. В отличие от интегрального подхода к обработке цифровых фотоизображений, где анализу подвергалось среднее по области обработки значение яркости Bср, предлагаемый авторами дискретный метод предполагает расчет количества пикселей N с уровнем яркости B, превышающем некоторую заданную пороговую яркость B0 (B≥ B0).  Заметим, что B0 может быть задано исследователем и варьироваться. Идея заключается в том, что для 8-разрядной камеры величина Bср (интегральный подход) может варьироваться лишь в пределах   0≤Bср≤255, в то время как число пиксель N (дискретный подход) может изменяться значительно в более широких пределах (0≤N≤N0). Величина   N – сумма всех пикселей изображения, яркости которых превышают заданное пороговое значение B0 (0≤B0≤255).  Значение N0 в значительной мере зависит от уровня порога  B0, в пределе оно может оказаться равным числу пиксель области обработки фотоизображения. Потенциально предлагаемый подход может расширить   пределы измеряемых величин, а, следовательно, увеличить разрешающую способность акусто-оптического метода типирования крови. Для иллюстрации на рисунке 2(а)  приведен вид подобных экспериментальных распределений N(B0)для одной из исследуемых проб крови при отрицательной и положительной реакциях агглютинации.

Из рисунков 2(а, б) видно, что площади фигур под кривыми для положительной S+(B0) и отрицательной S-(B0) реакций сильно отличаются, поэтому будем рассматривать величину площади S(B0) как показатель типа реакции агглютинации. Тогда величина разрешения может быть определена как R(B0)=S+(B0)/S-(B0).  Площади S+(B0) и S-(B0), а, следовательно, R зависят от заданной пороговой яркости B0, на рис. 2(а) эта площадь иллюстрируется заливкой для B0=50. В случае значения B0 = 0 при вычислении площадей  S+(B0) и S-(B0) учитывались значения N, соответствующие изменению B0 от 0 до 255, если B0 = 1, то при вычислении площади учитывались значения N соответствующие изменению B0  от 1 до 255 и т. д. тогда как в случае B0 = 255 площадь будет равна N(255).

3. Экспериментальные результаты, обсуждение

Как видно из рисунков 2(а, б) вид кривых распределения N(B0) для случаев положительной и отрицательной реакций агглютинации заметно отличаются. Обе кривые выходят из одной точки, соответствующей количеству пикселей в исследуемой области (так как очевидно, что все пиксели в области подходят под необходимое условие B0 ≥ 0). При этом в случае отрицательной реакции агглютинации кривая N(B) сразу резко снижается и быстро достигает нулевого значения N, в то время как при положительной реакции значение N(B0) сохраняется на начальном уровне и только при достаточно больших значениях B0 плавно снижается и также достигает нуля. Такое поведение кривых было характерным для всех исследуемых образцов. Очевидно, что при дискретном подходе на величину разрешения R может повлиять как значение ширины области w, так и величина порогового значения B0. Значение величины w может меняться в широких пределах, однако не следует делать его слишком большим, так как периферийные области изображений не несут никакой полезной информации о ходе реакции агглютинации в образце. Поведение кривой в случае отрицательной реакции агглютинации определяет величину предельно допустимого порогового значения яркости B0. Очевидно, что не имеет смысла выбирать значение B0 большим того значения B0кр (критическое), при котором значения кривой N(B0) для случая отрицательной реакции становятся равными нулю, так как в этом случае S- = 0 для любого значения B0 ≥ B0кр и величина разрешения R(B0)=S+(B0)/S-(B0) теряет смысл.

Предельно допустимое пороговое значение B0кр меняется в зависимости от выбранного размера области усреднения. При w = 50 для всех образцов (17 образцов с отрицательной реакцией агглютинации и 11 образцов с положительной реакцией агглютинации) предельно допустимое значение пороговой яркости B0кр, при котором величина S- еще не равна 0, оказалось равным 5. 

Как видно из рисунков 3(а, б), для всех пороговых значений B0кр с ростом значения w значение величины разрешения R остается практически постоянным и начинает плавно снижается с w = 100. Это связано с тем, что при достижении соизмеримости исследуемой области и светового пятна зондирующего излучения при дальнейшем росте w при положительной реакции в исследуемую область попадает все большее количество «темных» пикселей, в то время как количество «ярких» пикселей не изменяется. Это приводит к тому, что  с ростом w доля «ярких» пикселей для положительной реакции становится меньше, а их доля при отрицательно реакции чрезвычайно мала, в результате разрешение R снижается. 

На рисунке 3(в) приводится зависимость значения разброса dN от значения пороговой яркости B0 по всем результатам измерений. Для подсчета величины dN = Nmax - Nmin находились значения Nmin и Nmax соответствующие минимальному и максимальному значениям N(B0) по всем измерениям, выполненным для всех анализированных проб крови. Нулевое значение разброса dN как в случае отрицательной, так и в случае положительной реакции агглютинации для яркости B0 = 0 объясняется тем, что значение N(0) зависит только от размера выбранной области, является одинаковым для всех образцов, и не несет никакой информации о ходе реакции агглютинации в образце. Затем в случае отрицательной реакции значение разброса dN резко возрастает и затем так же резко снижается до нуля при значении яркости B0 = 6. Это объясняется тем, что для всех образцов при w = 50 в случае отрицательной реакции все кривые N(B) достигали нулевого значения в точке с B0 = 6. В случае положительной реакции агглютинации значение разброса dN  возрастает плавно и достигает максимума при значении B0 = 100, а затем так же плавно снижается и достигает нуля при значении B0 = 230. Это объясняется нестабильностью положительной реакции агглютинации, сила которой сильно варьируется от образца к образцу крови.

На рисунке 3(г) представлена зависимость значения минимально возможного, среднего и максимально возможного разрешения от величины порогового значения яркости B0 при w = 50. Значения разрешения вычислялись следующим образом: среднее значение разрешения R=Sср+/Sср-, где Sср+ и Sср- – соответствующие средние значения S+ и S- по результатам измерений для всех исследованных образцов крови. Минимальное возможное разрешение вычислялось следующим образом: Rmin=Smin+/Smax-, где Smin+ и Smax- – минимальное значение S+ и максимальное значение S- по всем результатам измерений соответственно. Аналогично, значение максимально возможного разрешения находилось по формуле: Rmax = Smax+/Smin-, где Smax+ и Smin- – максимальное значение S+ и минимальное значение S- по всем результатам измерений. Как видно из приведенного графика, значение разрешения R возрастает с ростом порогового значения B0, однако возрастает и разброс значений R и, как следствие, уменьшается надежность измерений и повторяемость результатов.

На основе проделанных измерений можно сделать вывод, что оптимальное значение ширины области w лежит в пределах от 30 до 100 пиксель, а оптимальное значение порогового критического значения яркости B0кр составляет 3 – 5 пиксель.

В таблицах 1 и 2 приведены результаты сравнения значения разрешающей способности акусто-оптического метода типирования крови R для прямого и обратного исследования реакции агглютинации, найденной двумя разными способами: интегральным (фотометрическим) и дискретным. При вычислении значения разрешения интегральным способом использовалась область ширины w = 50. Для вычисления значения разрешения дискретным способом была выбрана область такого же размера и формы (w = 50), пороговое критическое значение яркости B0кр = 4. Для определения разрешающей способности сначала вычислялось среднее значение мощности падающего светового потока Pср- (для интегрального метода) или среднее значение площади под кривой распределения N(B0) для данного порогового значения Sср- (для дискретного метода). Затем каждое значение мощности падающего светового потока P или площадь под кривой распределения N(B) для каждого из образцов делилась на соответствующие средние значения. Полужирным шрифтом выделены ячейки таблиц, которые принципиально соответствуют условиям для отрицательных реакций агглютинации. Эксперименты со «стандартными эритроцитами» AB(IV) не выполнялись в связи с отсутствием их производства в центрах крови.  

Результаты, представленные в этих таблицах, демонстрируют, что применение нового дискретного подхода к обработке результатов эксперимента позволяет увеличить разрешающую способность метода в 5-12 раз.

4. Заключение

Разрешающая способность метода является ключевым понятием при разработке любого метода автоматического типирования крови. Увеличение разрешающей способности позволяет повысить надежность метода и таким образом исключить возможную ошибку определения групповой принадлежности крови человека. Применение нового дискретного подхода к обработке результатов эксперимента позволяет значительно увеличить разрешающую способность метода (в 5-12 раз) по сравнению с используемым ранее интегральным подходом. Новый дискретный подход также позволяет в полной мере использовать все преимущества вебкамеры в качестве детектора, так как позволяет анализировать полученное изображение «по-пиксельно», а также, предполагает в дальнейшем возможность разработки на его основе алгоритма оценки силы реакции агглютинации. В целом можно считать разработку дискретного подхода к обработке экспериментальных результатов дальнейшим этапом развития акусто-оптического метода типирования крови человека.

Литература

  1. Vyas G.N. et al. (San Francisco, CA), Simultaneous human ABO and RH(D) blood typing or antibody screening by flow cytometry, United States Patent 5,776,711 July 7, 1998.
  2. Sturgeon P. Immunohematology, 17, 4 (2001)
  3. Kline T.R., Runyon M.K., Pothiawala M., Ismagilov R.F. Anal Chem., 80(16) 6190-7 (2008)
  4. Muranyi I. et al. (Budapest, HU), Blood typing apparatus,United States Patent 4533638, US Patent Issued on August 6, 1985
  5. Дубровский В.А., Дворецкий К.Н., Щербакова И.В., Балаев А.Э., Приборы и техника эксперимента, 42(2), 111-115 (1999),
  6. Steven R.A. A Simplified Visible/Near-Infrared Spectrophotometric Approach to Blood Typing for Automated Transfusion Safety, a thesis presented to North Carolina State University, Raleigh, North Carolina, USA, (2005).
  7. Lambert J.B. A miniaturized device for blood typing using a simplified spectrophotometric approach, a thesis submitted to North Carolina State University, Raleigh, North Carolina, USA, (2006)
  8. Moncharmont P., Plantier A., Chirat V., Rigal D. Immunohematology, 19(2), 54-6 (2003)
  9. Goldfinger Dennis, et al. (Encino, CA), Portable blood typing apparatus and method United States Patent 4650662, US Patent Issued on March 17, 1987
  10. Battrell, C.F. et al., Microfluidic apparatus and methods for performing blood typing and crossmatching, United States Patent, Patent application number: 20100112723, Publication date: 05/06/2010
  11. Yu. A. Ganilova, V.A. Doubrovski, I. V. Zabenkov, The resolving power of the flowing method to register the process of human erythrocytes agglutination in vitro on the base of correlation analysis of microphotographs,  // Proc.SPIE. 2011 V7999. 799903
  12. Дубровский В. А. , Долмашкин А. А. , Опт. и спектр., 109(2), 1346-50 (2010)
  13. Алипов А.Н., Ванинский В.З., Денисов Л.Б., Донсков С.И., Дубровский В.А., Завьялов Э.Н., Князьков Н.Н. Способ определения реакции агглютинации Авторское свидетельство изобретения. №1683760, приоритет от 04.06.1987, опубликовано Бюл. №38 от 30.10.1991 
  14. Doubrovski V.A., Dvoretski K.N. Ultrasound in Medicine & Biology., 26(4), 655 (2000).
  15. Дубровский В.А., Дворецкий К.Н., Балаев А.Э. Акустический журнал, 50(2), 184 (2004).
  16.    Дубровский В.А., Медведева М.Ф., Оптимизация условий прямой и обратной реакций агглютинации эритроцитов, усиленных стоячей ультразвуковой волной, Бюллетень медицинских Интернет конференций (ISSN 2224‐6150), 2013. Том 3. № 3, стр. 651-656 ,  www.medconfer.com
  17. Дубровский В.А., М.Ф.Медведева М.Ф., Оптимизация условий прямой и обратной реакций агглютинации эритроцитов, усиленных стоячей ультразвуковой волной, Проблемы оптической физики и биофотоники. SFM-2013. Саратов : Изд - во «Новый ветер», 2013, стр. 34-42
  18. Долмашкин А.А., Дубровский В.А., Забенков И.В., Определение группы крови на основе регистрации упругого рассеяния лазерного излучения методом цифровой фотографии. Квантовая электроника, 2012, 42, №5, 409-417

Таблицы

Таблица 1. Прямая реакция

Группа крови

0(I)

A(II)

B(III)

AB(IV)

Сыворотка

R=P/Pср-

R=S/Sср-

R=P/Pср-

R=S/Sср-

R=P/Pср-

R=S/Sср-

R=P/Pср-

R=S/Sср-

0(I)

1,09

1,29

176,21

1797,60

77,74

987,42

163,99

1718,75

A(II)

1,06

1,41

1,27

1,27

204,82

1963,07

113,71

1333,98

B(III)

1,51

2,83

123,80

1419,75

0,68

0,48

190,58

1883,90

AB(IV)

1,07

1,11

0,72

0,22

0,97

0,20

0,64

0,19


Таблица 2. Обратная реакция

Группа крови

0(I)

A(II)

B(III)

AB(IV)

Стандартные

эритроциты

R=P/Pср-

R=S/Sср-

R=P/Pср-

R=S/Sср-

R=P/Pср-

R=S/Sср-

R=P/Pср-

R=S/Sср-

0(I)

1,08

0,81

0,78

0,32

0,80

0,13

0,94

1,14

A(II)

203,97

1581,07

1,92

3,10

48,06

521,44

1,25

0,53

B(III)

71,18

739,58

200,30

1564,95

0,80

0,41

0,43

1,55

Рисунки

Рис. 1. а) - Схема установки для регистрации реакции агглютинации эритроцитов; б) - Спектры: 1 – поглощение гемоглобина (левая ось ординат), 2 – излучение светодиода (правая ось ординат); в, г) - Типичные фотографии засветки кюветы с исследуемым раствором в зеленом канале RGB для: в) отрицательной и г) положительной реакций агглютинации. Прямоугольником выделены зоны статистической обработки экспериментальных результатов, ширина области w=50 пиксель.
Рисунок 1
<p> Рис. 2. а) - Типичный вид распределения числа пикселей N(B0) с яркостью равной или большей пороговой B0 по области с w = 50 для отрицательной (1) и положительной (2) реакции. Площадь фигуры под кривой S при условии B0=50 залита серым цветом. б) - Усредненное по образцам крови распределение числа пикселей N(B0) с яркостью равной или большей пороговой B0 по области с w = 50 для отрицательной (1) и положительной (2) реакции.</p>
Рисунок 2
<p> Рис. 3. а, б) - Зависимость значения разрешения R от ширины области w для разных пороговых значений яркости B0кр: 1- B0кр= 0: 2 - B0кр= 1; 3 - B0кр= 3; 4 - B0кр= 4; 5 - B0кр= 5. в) - Зависимость значения разброса dN от значения пороговой яркости B0 для случаев отрицательной (1) и положительной (2) реакций при w = 50. г) - Зависимость минимального Rmin (1), среднего R (2) и максимального Rmax (3) значения разрешения от величины порогового критического значения яркости B0кр при w = 50.</p>
Рисунок 3
5
Ваша оценка: Нет Средняя: 5 (1 голос)



Оптимальный хостинг для Drupal, Wordpress, Joomla, Битрикс и других CMS, быстрые и надежные сервера, круглосуточная техподдержка Яндекс.Метрика