.
В структуре детской заболеваемости болезни органов мочевыделительной системы занимают второе место после респираторной патологии [1]. Увеличение заболеваемости нефропатиями, учащение первично хронических вариантов течения, вызывает обеспокоенность и указывает на необходимость дальнейшего изучения этиологии, механизмов развития и прогрессирования болезней почек [2]. До настоящего времени остается актуальной проблема происхождения нефропатий у детей. Существование большого разнообразия причин, ведущих к возникновению нефропатий, затрудняет решение вопроса о выборе адекватной этиотропной и патогенетической терапии, оценку эффективности методов лечения [3, 4]. Некоторые заболевания почек, которые манифестируют в дошкольном и школьном возрасте, берут свое начало еще в антенатальном и пренатальном периодах. [5]. Мысль о скрытых причинах возникновения нефропатий привела к попытке оценить влияние пищевых факторов на почки детей. В качестве пищевого фактора был выбран пищевой краситель – тартразин (Е 102), который широко используется в производстве напитков, мороженого, кондитерских изделий (конфет, драже, зефира, мармелада и др.). Несмотря на официальное разрешение использования тартразина в пищевой промышленности России и Украины, исследования индийских врачей свидетельствуют о появлении таких побочных эффектов тартразина, как аллергические реакции, у 3,8-4,2% пациентов [6]. Особая восприимчивость к тартразину, в частности, раздражительность, гиперактивность, беспокойный сон, была выявлена у детей [7].
Цель исследования: усовершенствовать диагностику и прогноз риска развития и прогрессирования нефропатий на основании углубленного клинико-экспериментального изучении роли обмена фосфолипидов под действием пищевых красителей.
Материалы и методы исследования: Эксперимент проведен на крысах – самках и самцах линии Вистар. Самки крыс получали по 1мл 0,1% раствора тартразина (в дозах, разрешенными стандартами для использования в пищевой промышленности) на протяжении 1 месяца. Крысы пребывали в стандартных условиях вивария. Часть крыс (7 самок основной и 7 самок контрольной групп) была подсажена к самцам. Во время беременности и кормления потомства самки продолжали получать тартразин. Часть потомков крыс выведены из эксперимента в возрасте 1 месяца (эквивалентно детскому возрасту), часть - в возрасте 2 месяцев (эквивалентно подростковому возрасту). 1-месячные крысята получали тартразин только через плаценту внутриутробно и с материнским молоком, а 2-месячным крысятам - дополнительно в течение 1 месяца вводился тартразин внутрижелудочно в той же дозе, что и их матерям. Контрольные группы – интактные животные такого же возраста – получали 1мл физиологического раствора.
В сыворотке крови крыс определяли содержание продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ) - малонового диальдегида (МДА) и диеновых коньюгат (ДК) спектрофотометрическим методом; белковый состав сыворотки крови определяли турбодиметрическим методом с помощью реагентов фирмы Ольвекс (Россия); содержимое FAS-лиганда - с помощью набора реагентов фирмы Bender Medsistem (Австрия); уровень молекул средней массы (МСМ) – спектрофотометрическим методом; мочевину, креатинин и активность аминотрансфераз - с помощью наборов реагентов фирмы La Chema (Чехия); активность каталазы – спектрофотометрическим методом; содержимое в гомогенатах почечной ткани общего белка - спетрофотометрически, липидов (триглицеридов, холестерина, фосфолипидов, общих липидов) - с помощью наборов реактивов фирмы Ольвекс (Россия).
Материал для морфологического исследования — правую почку после фиксации в 10% формалине заливали в парафин, а срезы толщиной 5-6 мкм красили пикрофуксином по Ван Гизу, ставилась ШИК-реакция для четкого выявления базальных мембран клубочковых капилляров. Световая микроскопия проводилась с использованием микроскопов Olympus BX-41 (Япония) и Zeiss.
Нами обследовано 79 детей в возрасте от 1 до 18 лет, из них с гломерулопатиями - 28 человек, с хроническим пиелонефритом – 51 детей. Верификация диагнозов проводилось на основе тщательного клинико-лабораторного и инструментального обследования больных по общепринятым методикам.
В группе детей с гломерулопатиями было больше детей старшего возраста, по полу - мальчиков. В группе детей с пиелонефритами – отношение мальчики/девочки зависело от возрастной группы (с увеличением возраста больных увеличивался процент девочек).
В структуре пиелонефритов превышали вторичные пиелонефриты на фоне врожденных аномалий развития мочевыводящей системы, пузырно-мочеточниковых рефлюксов, нейрогенной дисфункции мочевого пузыря, метаболических нарушений. Следует отметить, что часто даже тщательный анализ анамнестических данных (наследственность, течение беременности) для выявления возможных причин (генетических, биологических, физических, химических и др.) развития врожденных пороков почек и мочевыводящих путей не позволил идентифицировать причину их развития у детей. Выше сказанное позволяет допустить, что такими причинами могут быть пищевые продукты, содержащие те или иные красители и стабилизаторы. Путем анкетирования была выявлена частота употребления детьми продуктов, содержащих тартразин. При этом дети с гломерулопатиями употребляли тартразин в 2 раза чаще, чем дети с пиелонефритом.
В сыворотке крови детей определяли фосфолипидный обмен (общие фосфолипиды, лизофосфотидинхолин, сфингомиелин, фосфатидилхолин, фосфатидилинозитид, фосфатидилэтаноламин, фосфатидная кислота, фосфатидилсерин) методом В.С. Камышникова (2004), содержание в мочи гликозаминогликанов по П.Н. Шараеву с соавтор. (1987), уровень холестерина – по методу S.Ilca (1962).
Все полученные цифровые данные обработаны статистическими методами исследования.
Результаты исследования: В результате экспериментального исследования в сыворотке крови 1-месячных потомков основной группы по сравнению с контрольной группой повышен уровень β-глобулинов при существенном снижении уровня альбуминов, что можно расценить как нефротический тип протеинограммы (табл.1).
Кроме того, у крысят основной группы установлено повышение значения γ-глобулиновой фракции, что может быть связано с активацией гуморального звена иммунитета (табл.1).
Получение тартразина внутриутробно и с молоком матери 1-месячными потомками способствует увеличению FAS-лиганда в сыворотки крови. Продолжение употребления тартразина 2-месячными потомками показало увеличение FAS-лиганда, особенно у самцов (рис.1). Этот факт вместе с фактом увеличения γ-глобулиновой фракции протеинов можно расценить как наличие аутоиммунного процесса.
Увеличение креатинина (рис. 2) и мочевины крови (рис. 3) при длительном употреблении тартразина у крысят основной группы по сравнению с контролем, могут рассматриваться как критерии функциональных нарушений в почках. Из рис. 1, 2 видно, что чем дольше животное употребляет тартразин, тем больше выражены функциональные нарушения в почках. При этом у самцов повышение уровня мочевины и креатинина больше, чем у самок.
У 1-месячных самцов основной группы увеличена активность АсАт и АлАт, снижено содержание общего белка (табл.2), увеличен уровень липидов (преимущественно за счет триглицеридов, при снижении содержания фосфолипидов) (табл.3).
У самок увеличена активность АсАТ и АлАТ при повышенном, относительно группы контроля, содержании белка (табл.2). Содержание общих липидов не отличается от уровня у контрольных животных, но содержание в сыворотке фосфолипидов снижено, а триглицеридов – увеличено (табл.3).
У самцов активированы процессы ПОЛ (содержание МДА и ДК выросло) при снижении активности антиоксидантной системы (активность каталазы снижена). У самок активность каталазы не отличается от уровня каталазы у контрольных животных (табл.4).
У 2-х месячных крысят-потомков самок, которые получали тартразин за месяц до беременности, во время беременности и в период кормления, также изучено состояние прооксидантно-оксидантной системы. Как видно из полученных данных, у самок основной группы активируются как процессы ПОЛ, так и активность ферментов антиоксидантной системы (табл. 5). Возможной причиной активации процессов ПОЛ является токсичность тартразина для животных.
Известно, что степень токсичности вещества, которое вводится в организм, можно оценить по содержанию молекул средней массы. Изучение этого показателя в сыворотке крови показало, что уровень МСМ в среднем в 2 раза больше, чем у животных контрольной группы (табл.5). Как видно, токсическая нагрузка приводит к активации процессов ПОЛ, компенсаторно увеличивается активность ферментов АОС. У самцов основной группы содержание продуктов ПОЛ ниже, чем в контрольной группе, а активность ферментов АОС не отличается от контрольной группы.
Изучение содержания липидов в гомогенатах почечной ткани показало, что у самцов и самок основной группы снижен уровень фосфолипидов при повышенном содержании холестерина, что может быть связано с нарушением уровня у транспортных форм липидов в крови (табл.6). Уменьшение уровня фосфолипидов может быть причиной обновления фосфолипидного компонента мембран и, в связи с этим, с изменением транспорта через мембраны нефроцитов и регуляторных процессов в почечной ткани.
Таким образом, полученные результаты позволяют допустить, что у 1-месячных животных основной группы, особенно у самцов, имеет место дисбаланс в системе ПОЛ и антиоксидантной активности в почках, что указывает на нарушения в протекании метаболических процессов в целом. У самцов и самок наблюдаются также нарушения в синтезе и содержании липидов. Вероятно, снижение уровня фосфолипидов связано с наработкой антифосфолипидных антител (аутоиммунный процесс).
Анализ результатов проведенного исследования 2-месячных крысят-потомков, которые получали тартразин внутриутробно, с молоком матери, а после перехода на самостоятельное питание в течение 1 месяца самостоятельно употребляли тартразин с пищей, свидетельствует о том, что у этих животных нарушены метаболические процессы в почках: снижен уровень фосфолипидов при повышенном уровне холестерина. Изменения со стороны метаболических процессов приводит к функциональным нарушениям, о чем свидетельствует повышение уровня креатинина и мочевины в крови животных основной группы. При этом, чем дольше животное получает тартразин, тем больше выражены метаболические и функциональные нарушения со стороны почек. Исходя из данных биохимических исследований, можно допустить, что у самцов, которые получали тартразин, нарушения функций почек выражено больше, чем у самок.
Морфологически у 1-месячных крысят, получавших тартразин внутриутробно и с материнским молоком, клубочки почек размещены в коре неравномерно. Значительная часть клубочков редуцированные, представлены малым количеством капилляров (рис.4). Нормально развитые клубочки функционируют с повышенной нагрузкой, они гипертрофированы. Появление Ig G и увеличение количества макрофагов в некоторых клубочков свидетельствует о формировании иммунного поражения и воспаления клубочков (рис.5). Морфологическая картина поражения эпителия канальцев, местами со скоплениями макрофагов в строме может свидетельствовать о начале развития тубуло-интерстициального нефрита.
Если особь с внутриутробным началом поступления тартразина в организм продолжает получать его и после рождения, действующие клубочки выглядят гипертрофированными. При этом в них определяется большое количество макрофагов (рис.6), встречаются активные фибробласты, интенсивно идет процесс склероза как стенки капилляров, так и мезангиума (рис.7).
Таким образом, у крысят эквивалентных «подростковому» возрасту имеются гистологические признаки хронического гломерулонефрита. Значительное поражение эпителия канальцев с накоплением макрофагов в интерстиции и склерозированием стенки артериол можно трактовать как признаки хронического тубуло-интерстициального нефрита.
Результаты проведенного клинического исследования показали, что в фосфолипидном составе крови у детей наиболее существенные изменения отмечаются у больных с гломерулонефритами (особенно при нефротическом синдроме), которые получали продукты, содержащие тартразин чаще, чем несколько раз в месяц. Выявлено (табл.7) достоверное повышение уровней лизофосфатидилхолина (99,5±7,4 мг/л) и фосфатидилинозитида (75,5±11,6 мг/л), более значащее снижение уровней негативно заряженных фосфолипидов (фосфатидилхолин - 267,3±12,9 мг/л, сфингомиелин - 177,2±21,5 мг/л) у детей с гломерулонефритами в сравнении с больными пиелонефритом (64,5±16,7 мг/л; 50,6±20,1 мг/л; 300,4±17,5 мг/л; 184,8±12,8 мг/л соответственно). Отсутствие достоверных изменений концентраций других фракций фосфолипидов, возможно, обусловлена возможностью их к взаимопревращению, скоростью пластических процессов детского организма. Изменения фосфолипидного спектра крови у детей с пиелонефритами зависели от степени активности воспаления, вовлечением в него интерстициальной ткани, функционального состояния почек. Результаты исследования свидетельствуют о наличии мембранных нарушений, которые зависят от тяжести заболевания и активности воспаления при гломерулонефритах и пиелонефритах.
Исследование содержания общих фосфолипидов в моче показало, что уровень их существенно возрастает при нефротическом синдроме гломерулонефрита. Отмечена достоверная разница уровней гликозаминогликанов мочи – при гломерулонефритах (88,3±16 мкмоль/л) их уровень почти в 1,5 раза выше, чем при пиелонефритах (52,1±9,3 мкмоль/л). Эти изменения могут свидетельствовать не только о тяжести мембранных нарушений при гломерулонефритах, но и давать основание для предположения, что в развитии этой патологии имеет значение дисфункция соединительной ткани, клиническими проявлениями которой были выявлены признаки соединительно-тканной дисплазии.
Как свидетельствуют полученные данные, имеют место достоверные различия содержания ГАГ мочи, ЛФХ и ФИ крови у детей с гломерулонефритом и пиелонефритом, что свидетельствует о наиболее выраженных процессах дестабилизации клеточных мембран и соединительной ткани у детей с гломерулонефритом.
Анализ полученных данных выявил при гломерулонефритах у детей наличие достоверных положительных корреляционных связей между уровнями холестерину крови и ЛФХ (r=0,49, p<0,05), ФІ (r=0,74, p<0,05), уровнями общих ФЛ крови и ФИ (r=0,65, p<0,05), ЛФХ та ФИ крови (r=0,49, p<0,05). Также были выявлены отрицательные корреляционные связи между уровнями ГАГ мочи и общих ФЛ крови (r=-0,47, p<0,05), ЛФХ та ФХ крови (r=-0,62, p<0,05).
Выявленные изменения в фосфолипидном составе крови, уровни гликозаминогликанов мочи у детей с гломерулонефритами и пиелонефритами, однонаправленные корреляционные связи между рядом показателей дают основание допустить, что в генезе этих изменений могут иметь место тубулярные нарушения, как фактор активности и тяжести воспалительного процесса. Кроме того, на изменения показателей дестабилизации клеточных мембран может влиять не только активность воспаления, вовлечение тубуло-интерстициальной ткани в патологический процесс, но и сочетанное действие различных факторов, в том числе и пищевых, что подтверждается экспериментальным исследованием.
Выводы:
1. Основываясь на результатах проведенного исследования, можно полагать, что влияние пищевых факторов, действующих на человека в течение всей жизни, выступают как токсические и ксенобиотические агенты, обусловливающие повреждение как гломерул почки, так и канальцевого эпителия, что приводит к развертыванию более интенсивной (но неполноценной) регенерации почек со снижением их функциональных возможностей.
2. Внутриутробное начало действия повреждающих факторов намного усугубляет отрицательное воздействие, поскольку в течение периода эмбриофетогенеза происходит нарушение формирования почечных структур.
3. Синтетические пищевые добавки в современных условиях жизни являются риск-фактором развития нефропатий у детей.
Список опубликованных работ по данной теме:
1. Вплив харчових факторів на розвиток нефропатій у дітей Вісник Української медичної стоматологічної академії / Ю. В. Одинець, В. О. Головачова, Г. І. Губіна–Вакулік [та ін.] // Вісник Української медичної стоматологічної академії. – 2008. – Т. 8, №3 (23). – С. 26 –30.
2. Головачева В. А. Экзогенные факторы развития нефропатий у детей / Ю. В. Одинец, В. А. Головачева // Одеський медичний журнал. – 2009. – № 4 (114). – С. 29–33.
3. Головачова В. О. Вплив факторів зовнішнього середовища на фосфоліпідний спектр сироватки крові дітей, хворих на нефропатію / В. О. Головачова // Здоровье ребенка. – 2010. – № 3 (24). – С. 38–41.
4. Головачова В. О. Особливості фосфоліпідного спектра клітинних мембран у дітей, хворих на нефропатію / Ю. В. Одинець, В. О. Головачова, Т. В. Горбач // Медицина сьогодні і завтра. – 2010. – № 2–3 (47–48). – С. 150–154.
5. Пат. 51097 Україна, МПК А61В 10/00. Спосіб діагностики вторинної нефропатії у дітей / Одинець Ю. В., Головачова В. О.; заявник та патентовласник Харківський національний медичний університет. – № u 2010 03256 ; заявл. 22.03.10 ; опубл. 25.06.10, Бюл. № 12.
6. Особенности метаболических и морфологических изменений почек под действием пищевых факторов / Г. І. Губіна–Вакулік, Т. В. Горбач, В. О. Головачова [та ін.] // Проблемні питання діагностики та лікування дітей з соматичною патологією : Матеріали Української науково-практичної конференції. – Харків, 2008. – С. 35-37.
7. Головачова В. О. Вплив факторів зовнішнього середовища на особливості фосфоліпідного складу крові при патології нирок у дітей / Ю. В. Одинець, В. О. Головачова // Педіатрія, акушерство та гінекологія. – 2008. – №4 (428). – С. 105–106.
8. Экспериментальное обоснование возможности развития нефропатии у детей под действием пищевого красителя – тартразина / Ю. В. Одинець, Г.И. Губина-Вакулик, В. О. Головачова // Современные технологии в педиатрии и детской хирургии: Материалы VII Российского конгресса. – Москва, 2008. – С. 243-244.
9. Golovachova V. Influence of exogenous factors upon development of nephropathies in children / V. Golovachova // 2nd International Scientific Interdisciplinary Congress for medical students and young doctors : аbstract book. – Kharkiv, 2009. – P. 117–118.
10. Головачева В. А. Проблемные вопросы заболеваний почек у детей / Ю. В. Одинец, В. А. Головачева // ІІІ з’їзд нефрологів України : тези доповідей. – Луганськ, 2009. – С. 129–130.
11. Головачова В. О. Вплив факторів зовнішнього середовища на розвиток захворювань нирок у дітей / В. О. Головачова // Внесок молодих спеціалістів у розвиток медичної науки і практики : матеріали всеукраїнської науково-практичної конференції. – Харків, 2011. – С. 25.
Таблица 1. Белковый спектр сыворотки крови 1-месячных крысят.
Группы животных |
Альбумины, % |
Глобулины, % |
||||
α1 |
α2 |
β |
γ |
|||
Контроль |
Самки,n=17 |
56,84±2,31 |
2,45± 0,12 |
8,54±0,11 |
9,0±0,54 |
17,17±1,14 |
Самцы,n=20 |
52,44±3,06 |
3,42±0,24 |
9,17±0,51 |
13,6±0,95 |
21,81±1,45 |
|
Основная группа |
Самки,n=17 |
46,84±1,84 |
2,03±0,17 |
7,42±0,25 |
14,51±1,08 |
29,2± 1,33 |
Самцы,n=20 |
41,36±2,05 |
3,76±0,18 |
10,24±0,85 |
18,49±1,03 |
26,13±1,38 |
Таблица 2. Активность аминотрансфераз и содержание общего белка в гомогенатах почек 1-месячных крысят.
Группы животных |
АсАт, мкмоль/л |
АлАТ, мкмоль/л |
Общий белок, г/л |
|
Контрольная группа |
Самки, n=17 |
66,24±2,18 |
47,85±1,89 |
2,65±0,17 |
Самцы, n=20 |
51,28±1,89 |
36,43±2,0 |
1,89±0,12 |
|
Основная группа |
Самки, n=17 |
71,35±2,13* |
51,67±1,63* |
3,82±0,29* |
Самцы, n=20 |
59,75±3,11* |
42,61±1,55* |
1,08±0,07* |
Таблица 3. Содержание липидов в гомогенатах почек 1-месячных крысят.
Группы животных |
Общие липиды, г/л |
Триглицериды, ммоль/л |
Холестерин, ммоль/л |
Фосфолипиды ммоль/л |
|
Контро- ль ная группа |
Самки,n=17 |
8,55±0,53 |
3,57±0,12 |
9,25±0,57 |
1,83±0,12 |
Самцы,n=20 |
7,11±0,47 |
2,68±0,14 |
7,83±0,55 |
2,64±0,15 |
|
Основная группа |
Самки, n=17 |
8,17±0,68 |
6,05±0,47* |
11,03±0,62* |
0,72±0,03* |
Самцы, n=20 |
12,34±1,02 |
5,89±0,31* |
10,05±0,89* |
1,05±0,08* |
Примечание* - расхождения, достоверные в сравнении с контрольной группой
Таблица 4. Содержание продуктов ПОЛ и активности ферментов антиоксидантной защиты в гомогенатах почек 1-месячных крысят.
Группы животных |
МДА, мкмоль/л |
ДК, мкмоль/л |
Каталаза, мккат/л |
|
Контрольная группа |
Самки, n=17 |
7,65±0,53 |
23,11±1,65 |
1,89±0,12 |
Самцы, n=20 |
8,39±0,62 |
30,25±2,08 |
1,23±0,08 |
|
Основная группа |
Самки, n=17 |
9,33±0,57* |
27,13±1,38* |
2,03±0,19 |
Самцы, n=20 |
12,45±1,13* |
41,55±1,89* |
0,92±0,06* |
Примечание* - расхождения, достоверные в сравнении с контрольной группой
Таблица 5. Содержание продуктов ПОЛ, МСМ и активности ферментов антиоксидантной защиты в сыворотке крови 2-месячных крысят.
Группы животных |
ДК, мкмоль/л |
Каталаза, мккат/л |
МСМ, у.ед. |
|
Контрольная группа |
Самки, n=17 |
45,64±1,22 |
3,85±0,25 |
0,095±0,004 |
Самцы, n=20 |
53,17±5,08 |
4,37±0,31 |
0,104±0,007 |
|
Основная группа |
Самки, n=17 |
61,34±3,42*, р<0,01 |
5,49±0,47*, р<0,02 |
0,186±0,008*, р<0,01 |
Самцы, n=20 |
46,18±2,33*, р<0,01 |
4,09±0,29*, р<0,05 |
0,243±0,002*, р<0,01 |
Примечание* - расхождения, достоверные в сравнении с контрольной группой
Таблица 6. Содержание липидов в гомогенатах почек 2-месячных крысят.
Группы животных |
Общие липиды, г/л |
Триглицери- ды, ммоль/л |
Холестерин, ммоль/л |
Фосфолипиды ммоль/л |
|
Контроль-ная группа |
Самки, n=17 |
7,68±0,48 |
4,05±0,27 |
10,79±1,03 |
1,42±0,11 |
Самцы, n=20 |
7,09±0,64 |
2,65±0,17 |
9,34±0,58 |
1,89±0,09 |
|
Основная группа |
Самки, n=17 |
8,07±0,64*, р<0,05 |
3,89±0,28*, р<0,05 |
15,22±1,07*, р<0,01 |
0,82±0,04*, р<0,05 |
Самцы, n=20 |
7,81±0,55*, р<0,05 |
3,09±0,19*, р<0,05 |
14,98±1,03*, р<0,01 |
0,91±0,05*, р<0,01 |
Примечание* - расхождения, достоверные в сравнении с контрольной группой
Таблица 7. Содержание гликозаминогликанов мочи, фосфолипидов и их фракций в крови детей с нефропатиями.
Показатели |
Группы обследованных |
|
Гломерулонефрит (n=28) |
Пиелонефрит (n=51) |
|
ГАГ*, мкмоль/л |
88,3±16 |
52,1±9,3 |
Общие ФЛ, мг/л |
765,0±29 |
754,2±22,6 |
ЛФХ, мг/л |
99,5±7,4 |
64,5±16,7 |
СФМ, мг/л |
177,2±21,5 |
184,8±12,8 |
ФХ, мг/л |
267,3±12,9 |
300,4±17,5 |
ФИ, мг/л |
75,5±11,6 |
50,6±20,1 |
ФЭА, мг/л |
61,7±5,7 |
65,3±9,5 |
ФК, мг/л |
48,5±7,0 |
52,2±6,5 |
ФС, мг/л |
33,9±7,5 |
33,4±5,3 |
Примечание*. ГАГ – гликозаминогликаны мочи; ФЛ - фосфолипиды; ЛФХ - лизофосфотидинхолин; СФМ - сфингомиелин; ФХ - фосфатидилхолин; ФИ - фосфатидилинозитид; ФЭА - фосфатидилэтаноламин; ФК – фосфатидная кислота; ФС – фосфатидилсерин.